類器官技術(shù)“爆紅”的背后,是“趕時髦”科研還是有“真材實料”呢? 一直以來,“類器官”一詞被寬泛地用于所有來源于原代組織 (組織亞基或單細(xì)胞)、胚胎干細(xì)胞 (ESCs) 和誘導(dǎo)多能干細(xì)胞 (iPSCs)、已建立的細(xì)胞系以及完整或分段器官 (如由多種組織類型組成的器官外植體) 的三維 (3D) 器官型培養(yǎng)。 我們可以這樣理解,類器官是完全由原代組織、ESCs 或 iPSCs 衍生而來的體外 3D 細(xì)胞簇,它們具有自我更新和自組織能力,并表現(xiàn)出與起源組織相似的器官功能。 其實,3D 類器官培養(yǎng)是在上個世紀(jì)建立和發(fā)展起來的。早在 1907 年,Wilson 等人首次表明,分離的海綿細(xì)胞能夠自組織再生成整個生物體。2009 年,Hans Clevers 和同事在腸道類器官培養(yǎng)系統(tǒng)中取得突破性進展,開啟了類器官技術(shù)的發(fā)展“新紀(jì)元”。 目前,已有方法可以構(gòu)建肝臟、結(jié)腸、腸道、腎臟、肺、前列腺、胰腺、胃、大腦皮層和視網(wǎng)膜等多種組織的類器官。體外類器官模型是一項重大的技術(shù)突破,它為研究組織發(fā)育、疾病建模、藥物篩選、個性化醫(yī)學(xué)和細(xì)胞治療提供了一個強大的工具 。 圖 1. 類器官技術(shù)的多樣化應(yīng)用[2] 2) 類器官可以快速擴增、冷凍保存,且能應(yīng)用于高通量分析; 4) 類器官是傳統(tǒng) 2D 培養(yǎng)和體內(nèi)小鼠模型之間的重要橋梁,因為它們比單層培養(yǎng)模型更具有生理相關(guān)性,而且比體內(nèi)模型更易于操縱生態(tài)位成分、信號通路和基因組編輯。 圖 2. 建立小鼠可再生的腎類器官應(yīng)用于腎毒性劑量定量篩選[12] 文中所用 Noggin, R-spondin 1, SB431542, CHIR99021, FGF-4, FGF-basic 源自 MCE。 在藥物篩選 (Drug screening) 中,2D 培養(yǎng)缺乏組織結(jié)構(gòu)和復(fù)雜性,這可能是藥物篩選結(jié)果多次不能重現(xiàn)體內(nèi)環(huán)境的原因,而患者來源的類器官 (PDO) 高度概括了腫瘤來源的特征,具有更高的敏感性、異質(zhì)性和穩(wěn)定性,與傳統(tǒng)的患者來源的癌細(xì)胞系 (PDC) 模型和人源腫瘤異種移植 (PDX) 模型相比,具有無可比擬的優(yōu)勢 (如圖 3)。 文中所用 Noggin, R-spondin 1, FGF-basic 源自 MCE。 此外,癌癥類器官還可以在芯片上進行保存、復(fù)蘇、無限傳遞和機械培養(yǎng),用于藥物篩選。許多影響人類的致病病毒表現(xiàn)出物種特異性,對新型病毒生物學(xué)的理解很大程度上依賴于允許病毒復(fù)制的體外模型,近期,類器官被用于 COVID-19 的研究,彌合了細(xì)胞系和體內(nèi)動物模型之間的差距。 這么多優(yōu)點,應(yīng)用這么廣泛,類器官技術(shù)這把火恐怕還不夠旺?! 圖 4. 類器官培養(yǎng)與 2D 細(xì)胞培養(yǎng)及動物實驗研究的比較[5] 類器官可以由兩種類型的細(xì)胞生成:1) 多能干細(xì)胞 (PSC),例如胚胎干細(xì)胞 (ESC) 和誘導(dǎo)多能干細(xì)胞 (iPSC);2) 器官限制性成體干細(xì)胞 (ASC)。在適當(dāng)?shù)臈l件下,用細(xì)胞外基質(zhì)培養(yǎng),如 Matrigel,輔以各種生長因子,促進干細(xì)胞增殖與分化,并自組織成功能性 3D 結(jié)構(gòu)。 各種組織的類器官的培養(yǎng)方法是類似的,可以簡單得概括為: 3) 干細(xì)胞在類器官中保持并長存,即保持“干性”,并且不斷產(chǎn)生分化的多種細(xì)胞類型子代,這些細(xì)胞類型自組織成功能性 3D 結(jié)構(gòu)。另外,3D 類器官可以解離,并鍍到涂有基底膜基質(zhì) (MG) 或膠原蛋白 (collagen) 的膜支持物上,形成 2D 單層類器官模型。 圖 6. 原代組織和 ESCs/iPSCs 產(chǎn)生和培養(yǎng)類器官[6] 類器官可自發(fā)地分化,或通過添加適當(dāng)?shù)姆只蜃?/span>和/或撤除促進干細(xì)胞特性的因子,以誘導(dǎo)分化得到所需的譜系或細(xì)胞類型。 類器官的培養(yǎng)離不開誘導(dǎo)細(xì)胞分化的細(xì)胞因子,MCE 提供各種類器官培養(yǎng)用細(xì)胞因子,高活性、高純度、低內(nèi)毒素!此外,類器官培養(yǎng)所需小分子小 M 也一并貼心奉上~~向培養(yǎng)基中加入神奇“魔法”,收獲強大的研究工具! MCE 的所有產(chǎn)品僅用作科學(xué)研究或藥證申報,我們不為任何個人用途提供產(chǎn)品和服務(wù)。 參考文獻 2. Claudia Corrò, Vivian S.W. Li, et al. A brief history of organoids. Am J Physiol Cell Physiol. 2020 Jul 1;319(1):C151-C165. 3. Marina Simian, Mina J Bissell. Organoids: A historical perspective of thinking in three dimensions. J Cell Biol. 2017 Jan 2;216(1):31-40. 4. Xiaolei Yin, Jeffrey M. Karp, Oren Levy, et al. Engineering Stem Cell Organoids. Cell Stem Cell. 2016 Jan 7;18(1):25-38. 5. Mo Li, Juan C Izpisua Belmonte. Organoids-Preclinical Models of Human Disease. N Engl J Med. 2019 Feb 7;380(6):569-579. 6. Aliya Fatehullah, Nick Barker, et al. Organoids as an in vitro model of human development and disease. Nat Cell Biol. 2016 Mar;18(3):246-54. 7. HansClevers. Modeling Development and Disease with Organoids. Cell. 2016 Jun 16;165(7):1586-1597. 8. Yoshiki Sasai, et al. In vitro organogenesis in three dimensions: self-organising stem cells. Development. 2012 Nov;139(22):4111-21. 9. Soumya K Kar, et al. Organoids: a promising new in vitro platform in livestock and veterinary research. Vet Res. 2021 Mar 10;52(1):43. 10. Eliah R Shamir, Andrew J Ewald. Three-dimensional organotypic culture: experimental models of mammalian biology and disease. Nat Rev Mol Cell Biol. 2014 Oct;15(10):647-64. 11. Hanxiao Xu, Kongming Wu, et al. Organoid technology and applications in cancer research. J Hematol Oncol 11, 116 (2018). 12. Chengyong He, Shaohua Ma, Zhenghong Zuo, et al. Black Phosphorus Quantum Dots Cause Nephrotoxicity in Organoids, Mice, and Human Cells. Small. 2020 Jun;16(22):e2001371. 13. Lisi Zeng, Shuzhong Cui, Shengwei Jiang, et al. Raltitrexed as a synergistic hyperthermia chemotherapy drug screened in patient-derived colorectal cancer organoids. Cancer Biol Med. 2021 Mar 12;18(3):750-762. |
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