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CRISPR基因編輯MC-3T3細胞系——骨相關(guān)研究的神器

 生物學渣 2020-11-11

1981年, 科學家成功從新生小鼠頭蓋骨中獲得了成骨細胞模型--MC-3T3細胞。這種成骨細胞系在體外保持了向成骨細胞分化和礦化的能力,使其成為骨生物學研究中非常有用的細胞模型。MC-3T3能夠產(chǎn)生膠原并分化為成骨樣細胞,在體外和體內(nèi)形成鈣化組織。早期的研究表明,骨組織通過成骨細胞骨形成和破骨細胞骨吸收不斷重塑,以維持骨體積和體內(nèi)平衡。因此,骨重建被認為是由成骨細胞、破骨細胞和骨細胞之間的串擾來調(diào)節(jié)的。MC-3T3細胞也成為了此類骨相關(guān)研究的重要體外模型。

應(yīng)用:


MC-3T3細胞具有向成骨細胞分化的能力?;贑RISPR/Cas9的MC-3T3細胞基因編輯可以加速骨研究。MC-3T3已經(jīng)廣泛應(yīng)用于以下幾類研究:

1. 型膠原蛋白生物合成,這是細胞外骨基質(zhì)中最重要和最豐富的有機成分,提供骨骼強度和柔韌性。

2. WNT信號通過調(diào)節(jié)成骨細胞增殖分化和基質(zhì)礦化而成為骨形成的重要調(diào)節(jié)因子。

3. 轉(zhuǎn)化生長因子TGFβ信號轉(zhuǎn)導,骨重建異常,骨轉(zhuǎn)換增加。

4. 成骨細胞分化,一種調(diào)控成骨細胞分化的成骨細胞特異性轉(zhuǎn)錄因子。功能喪失導致成骨細胞分化和骨形成減少。

CRISPR-U? 介導的MC-3T3細胞的基因編輯


基因編輯和細胞模型的建立可以促進功能基因組學、信號通路、代謝、細胞死亡、藥物發(fā)現(xiàn)、藥物反應(yīng)和癌癥等領(lǐng)域的研究。目前,成骨細胞模型(MC-3T3)廣泛應(yīng)用于細胞分化、旁分泌因子對骨形成或吸收的影響研究。最近的研究發(fā)現(xiàn),影響骨組織穩(wěn)態(tài)的突變蛋白和新的途徑參與骨骼發(fā)育和維持。為了加速骨生物學研究,利用CRISPR/Cas9系統(tǒng)可以在MC-3T3細胞中實現(xiàn)基因組編輯。通過CRISPR構(gòu)建的細胞模型使研究各種骨骼疾病的機制成為可能,這些疾病主要與骨骼發(fā)育、吸收、骨肉瘤和代謝過程有關(guān)。在闡明致病機制的基礎(chǔ)上,這些細胞模型可以與藥物篩選和其他治療研究相結(jié)合。

案例分析

利用CRISPR介導的基因敲除MC-3T3,發(fā)現(xiàn)一種預(yù)防或逆轉(zhuǎn)骨質(zhì)疏松癥的新途徑:


骨質(zhì)疏松癥是一個巨大且日益嚴重的公共健康問題。骨質(zhì)疏松癥以低骨量和骨微結(jié)構(gòu)缺陷為特征,導致骨折的易感性增加。骨骼健康的維持有賴于骨吸收的破骨細胞和成骨細胞的協(xié)調(diào)和平衡作用,從而實現(xiàn)骨骼的凈平衡。因此,臨床上需要尋找新的治療骨質(zhì)疏松癥的分子靶點,特別是那些在刺激骨形成的同時抑制骨吸收的分子靶點。維甲酸受體相關(guān)孤兒受體β(Rorβ)是一種新的成骨細胞分化的負調(diào)節(jié)因子,在從老年骨質(zhì)疏松小鼠分離的骨髓源性骨祖細胞中Rorβ的表達高度升高,提示Rorβ在介導年齡相關(guān)性骨丟失中的潛在作用。在成骨前小鼠細胞系MC-3T3中的過度表達研究表明,已知的成骨途徑有顯著的調(diào)節(jié)作用,支持Rorβ調(diào)節(jié)成骨的關(guān)鍵作用。研究人員應(yīng)用CRISPR/Cas9基因編輯技術(shù)證明,成骨細胞中Rorβ的丟失增強了Wnt信號傳導,特別是通過在Wnt靶基因Tcf7和Opg的啟動子中增加β-catenin對T細胞因子/淋巴增強因子(Tcf/Lef)DNA結(jié)合位點的招募。因此,通過增加Rorβ缺陷MC-3T3細胞中骨保護素(OPG)的分泌,增加成骨基因的表達并抑制破骨細胞的形成。

Model of Rorβ action in bone

CRISPR介導的Rorβ突變體的構(gòu)建及基因表達分析:


Rorβ基因有兩個亞型(Rorβ1和Rorβ2),其中Rorβ2亞型不可檢測。因此,Rorβ1是Rorβ基因的代表。Rorβ1的ATG起始密碼子位于外顯子1的3′端,因此,靶向外顯子2進行基因編輯。設(shè)計3個gRNA,在測試編輯效率后,選擇一個gRNA刪除MC-3T3細胞中的Rorβ。用非特異性gRNA產(chǎn)生的對照細胞系MC3T3-Cont。mc3t3drorβ細胞系的克隆和序列分析顯示,小鼠Rorβ等位基因存在1堿基對(bp)和4-bp缺失,導致移碼突變,最終導致無功能等位基因。為了分析Rorβ缺失對成骨細胞基因表達的影響,從成骨培養(yǎng)基中培養(yǎng)的MC3T3-Cont和MC3T3-DRorβ細胞中采集不同時間點的RNA樣本。QPCR分析顯示骨標記基因在MC3T3-DRorβ細胞中的表達顯著增加。

圖1: CRISPR/Cas9在MC3T3-E1前成骨細胞中Rorβ缺失。(A)顯示了小鼠Rorβ基因的內(nèi)含子/外顯子結(jié)構(gòu)。(B)用CRISPR/Cas9基因編輯方法對小鼠Rorβ基因第2外顯子(大寫)進行了突變。用于靶向等位基因的gRNA序列以黃色突出顯示。(C-G)兩種細胞模型用成骨培養(yǎng)基處理,并在第0-10天(n=6)采集供骨標志物進行qPCR。




Rorβ缺陷成骨細胞通過β-catenin依賴機制顯示增強的Wnt信號:


突變的MC3T3-DRorβ細胞被用來識別典型細胞通路的改變。他們觀察到Wnt/β-catenin通路的顯著改變,以及MC3T3-DRorβ細胞中調(diào)節(jié)該通路的幾種已知的調(diào)節(jié)因子的表達。IPA分析顯示T細胞因子/淋巴增強因子(Tcf/Lef)DNA結(jié)合位點顯著富集。這些結(jié)果表明,成骨細胞中Rorβ的丟失導致Wnt/β-catenin通路的改變。RNAseq證實了兩個著名的Wnt靶基因Opg和Tcf7,并觀察到該基因在Rorβ缺陷細胞中的表達在整個時間過程中顯著上調(diào)。Wnt通路在Rorβ缺陷成骨細胞Opg和Tcf7上調(diào)中的作用,使用DKK1或JW55進行的一系列抑制劑研究發(fā)現(xiàn)Wnt通路因Rorβ的丟失而改變。

圖2:Rorβ調(diào)節(jié)Wnt/βcatenin通路。(A,B)RNAseq和IPA分析鑒定的Wnt/βcatenin調(diào)控基因在MC3T3 DRorβ中有顯著調(diào)控。(C,D)重新查詢和分析圖1中的時間進程,以獲得Opg和Tcf表達式。(E,F(xiàn))MC3T3-Cont和MC3T3-D Rorβ細胞系在合流處用成骨培養(yǎng)基處理,然后補充Dkk1(200ng/mL)、JW55(10mM)或兩者兼用;48小時后取細胞,并對Opg和Tcf7進行qPCR(n=6)。

Rorβ缺陷細胞通過產(chǎn)生OPG抑制破骨細胞的形成:


對MC3T3-Cont和MC3T3-DRorβ細胞進行芯片檢測,以了解β-catenin調(diào)控Opg和Tcf7基因的機制。研究人員發(fā)現(xiàn),在Rorβ缺陷細胞中,位于Opg和Tcf7基因啟動子內(nèi)的Tcf/Lef DNA結(jié)合位點的β-catenin和RNA聚合酶(RNAP)募集增加。他們驗證了Rorβ抑制了TOP-FLASH Wnt報告結(jié)構(gòu)中組成活性形式β-catenin(ca-βcat)的轉(zhuǎn)錄活性。因此,他們得出結(jié)論,Rorβ通過抑制成骨細胞Wnt反應(yīng)基因啟動子中Tcf/Lef結(jié)合位點的β-catenin募集來抑制Wnt活性。他們評估了OPG增加對破骨細胞生成的影響。他們發(fā)現(xiàn)Rorβ缺陷細胞能夠通過增加OPG的產(chǎn)生和分泌來抑制破骨細胞的生成。

圖3:Rorβ-缺失增強了β-catenin向Wnt反應(yīng)基因啟動子的募集。(A–D)在用10 ng/mL Wnt3a或未經(jīng)處理(基礎(chǔ))6小時后,對MC3T3 Cont和MC3T3 DRorβ細胞系進行芯片分析。對Opg和Tcf7基因啟動子中的β-catenin、RNAP和QPCR進行IPs檢測。這些數(shù)據(jù)是與IgG陰性對照IP相關(guān)的。(E)Ca-βcat和TOP-FLASH共轉(zhuǎn)染-/+Rorβ,48小時后測定熒光素酶活性(n=6)。(F)收集處理細胞的CM,ELISA法測定OPG蛋白水平。(G)骨髓源性破骨細胞前體與含1%培養(yǎng)基的破骨細胞支持培養(yǎng)基孵育。


綜上,Rorβ缺失對骨保護作用在骨微環(huán)境中引發(fā)多方面的反應(yīng)。Rorβ的缺失通過增加Tcf7和Wnt信號反應(yīng)來促進骨形成。同時,Rorβ缺失通過增加OPG的產(chǎn)生和分泌來影響骨吸收,從而減少破骨細胞數(shù)量和破骨細胞活性??偟膩碚f,增加骨形成和減少骨吸收是預(yù)防骨丟失的結(jié)果。抑制Rorβ可能是防治骨質(zhì)疏松癥的新途徑。

References:
1. Osteoprotection Through the Deletion of the Transcription Factor Rorb in Mice. Journal of Bone and Mineral Research, 33(4) 2018, 720–731.

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