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科研人必備的實(shí)驗(yàn)技能

 外科黃文斌 2021-11-15

1. 基礎(chǔ)知識(shí)儲(chǔ)備

任何一個(gè)新的研究方向都離不開理論依據(jù),查閱參考文獻(xiàn)資料并總結(jié)是一個(gè)科研人的必備技能。啟動(dòng)實(shí)驗(yàn)的第一步當(dāng)然就是實(shí)驗(yàn)?zāi)P偷慕ⅰ?/span>

關(guān)于動(dòng)物模型制作:在開始制作活體動(dòng)物模型之前,查閱文獻(xiàn),確定制作方法,包括但不限于確定實(shí)驗(yàn)鼠類型、月齡、性別、給藥劑量、給藥方式、一次或多次給藥時(shí)間、動(dòng)物生存活動(dòng)環(huán)境,實(shí)驗(yàn)鼠是否需要分籠單只飼養(yǎng)、給藥前是否需禁水和(或)禁食等等,如果模型制作失敗,請(qǐng)檢查制作模型的過程中的每一個(gè)步驟,必要時(shí)再次查閱相關(guān)資料適當(dāng)調(diào)整。

以小鼠灌胃給藥為例,選用合適型號(hào)的灌胃針,抓取小鼠使其頭頸部成一條直線,方便灌胃針從口角進(jìn)入。針頭進(jìn)入小鼠的食管即可,不可過深,手法要輕柔,否則會(huì)戳傷小鼠食道或胃壁,灌胃容積一般不超過0.8毫升,最多不可超過1毫升。

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2. 手術(shù)操作或取材

這一部分沒什么需要特別注意的,記住兩點(diǎn):準(zhǔn)備好取材所需器材,例如手術(shù)刀、組織剪、眼科剪、鑷子、EP管、培養(yǎng)皿、75%酒精、麻醉劑和必備液體(例如4%PFA固定液)等;提前了解目標(biāo)取材位置,要盡量快速地做固定、冷凍、離體孵育或其他處理,保證實(shí)驗(yàn)樣本保存完好。

3. 明確實(shí)驗(yàn)?zāi)繕?biāo)的特征或特性

根據(jù)研究目標(biāo)的不同水平選擇實(shí)驗(yàn)類型,例如,在蛋白水平,一般選用特定染色方法顯示形態(tài)或共存情況,選用Western Blot統(tǒng)計(jì)蛋白量表達(dá)的升高或降低;在RNA水平,一般選用聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(Polymerase Chain Reaction,PCR)體現(xiàn)基因表達(dá)的上調(diào)或下調(diào)等;在離體狀態(tài),可選用模擬體液環(huán)境的孵育實(shí)驗(yàn)對(duì)離子通道進(jìn)行干預(yù)或不做干預(yù),探討研究目標(biāo)的產(chǎn)生、分泌、消耗等;利用在體實(shí)驗(yàn)探討生理或病理(口服給藥,腹腔注射,靜脈注射,基因敲除等)情況下研究目標(biāo)的變化或調(diào)控等。如果不清楚如何選擇實(shí)驗(yàn)方法,查閱文獻(xiàn)資料或者問前輩。

以染色為例:選擇典型的染色方法很重要。明場(chǎng)染色相較于免疫熒光染色保存時(shí)間較長(zhǎng)。例如HE染色(觀察組織形態(tài)等),PAS染色(糖原染色,一般用來顯示糖元和其它多糖物質(zhì)),DAB染色(免疫組化染色,需注意顯色時(shí)間),Masson染色(膠原纖維呈藍(lán)色,肌纖維呈紅色。用來顯示組織中纖維以及炎性因子的染色方法之一)等,一定要根據(jù)目標(biāo)特性選擇不同染色方法。


4. 準(zhǔn)備實(shí)驗(yàn)材料
千萬不要小看實(shí)驗(yàn)材料的準(zhǔn)備,在選定實(shí)驗(yàn)方法之后,檢查實(shí)驗(yàn)所用到的器械和材料等是否準(zhǔn)備完畢,確保實(shí)驗(yàn)材料的齊全是保證實(shí)驗(yàn)順利進(jìn)行的第一步,畢竟在某些爭(zhēng)分奪秒的時(shí)間里現(xiàn)場(chǎng)準(zhǔn)備實(shí)驗(yàn)材料是來不及的,而且會(huì)大大影響實(shí)驗(yàn)結(jié)果的準(zhǔn)確性。

注意一些實(shí)驗(yàn)常用液體(例如PBS,PBST,TBS,TBST,梯度酒精,Kerb’s液等),記得檢查配液時(shí)間和可回收利用液體的使用次數(shù)等,如果發(fā)現(xiàn)肉眼可見的性狀改變,如出現(xiàn)沉淀、絮狀物,顏色改變等,請(qǐng)重新配液。

以Western Blot蛋白提取為例,樣本類型不同(組織樣本、貼壁細(xì)胞樣本、懸浮細(xì)胞樣本等)選擇的裂解液也不同,要根據(jù)自己的實(shí)驗(yàn)?zāi)康倪x擇合適的裂解液。一般使用RIPA裂解液(主要從動(dòng)物組織和動(dòng)物細(xì)胞中抽取可溶性蛋白)。RIPA裂解液的配方有很多種,根據(jù)其裂解液的強(qiáng)度大致可以分為強(qiáng)、中、弱三類。關(guān)于不同的RIPA裂解液以及其它裂解液的主要特點(diǎn)和差異,以及如何選擇裂解液,參考如下:

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另外,Western Blot蛋白轉(zhuǎn)移膜也可根據(jù)實(shí)際情況選擇。一般分為三種材質(zhì):NC膜,PDVF膜和尼龍膜,區(qū)別如下:

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5. 把握實(shí)驗(yàn)時(shí)間
對(duì)于一些復(fù)雜的實(shí)驗(yàn),請(qǐng)一定要根據(jù)實(shí)驗(yàn)步驟里規(guī)定的時(shí)間進(jìn)行操作,不得提前或拖延。例如,染色過程中染色或脫色時(shí)間不準(zhǔn)確,就會(huì)導(dǎo)致顯色過深、過淺、深淺不一甚至不顯色。再者,Western Blot電泳(俗稱跑膠)時(shí)間一定不能提前結(jié)束或延遲結(jié)束,讓蛋白跑得太久,指定離家出走,跑的時(shí)間太短又達(dá)不到分離蛋白的目的(可以根據(jù)溴酚藍(lán)的位置判斷跑膠時(shí)間是否合適,其實(shí)跑膠時(shí)間也不是特別固定的一個(gè)數(shù)字,而是一個(gè)區(qū)間,具體與蛋白樣品、儀器電壓、或凝膠的質(zhì)量有關(guān)哦~ 當(dāng)然,如果配膠過程出現(xiàn)問題,就可能導(dǎo)致膠體本身不凝,或漏液后凝膠量不夠,導(dǎo)致配膠失敗,這個(gè)在下一部分講);還有轉(zhuǎn)膜過程,時(shí)間不合適的話,目標(biāo)蛋白就跟你的NC膜或PVDF膜無緣啦!另外,注意合理安排自己實(shí)驗(yàn)的時(shí)間,注意一些總時(shí)長(zhǎng)較久的實(shí)驗(yàn),盡量早點(diǎn)開始做,否則要么餓肚子要么熬大夜,實(shí)驗(yàn)也不一定能做好,實(shí)慘。

6. 注意實(shí)驗(yàn)細(xì)節(jié)
切記“細(xì)節(jié)決定成敗”。
以Western Blot膠體的配制為例,目前一般使用SDS-PAGE膠作為Western Blot的基礎(chǔ),按照說明書配液即可。在配制前的準(zhǔn)本工作中,需注意仔細(xì)檢查制膠器和玻璃板(包括長(zhǎng)板和短板)是否完好,盡量避免玻璃板體存在較大的劃痕或有角破損,充分洗凈制膠器和玻璃板并晾干(可以噴灑無水乙醇加快水分蒸發(fā)),后進(jìn)行膠體配制。這里分享一個(gè)配膠前的小技巧:組裝好制膠器后,可以在玻璃板間隙加入一些無水乙醇,記住液面位置,計(jì)時(shí)3-5分鐘,觀察液面位置是否下移,判斷該制膠器是否有漏液情況,否則在配膠過程中出現(xiàn)漏液情況是比較麻煩的,要拆了重洗哦~
膠體分為分離膠和濃縮膠(也就是通常說的下層膠和上層膠),膠體凝固的標(biāo)志如下:

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注意:此處分離膠上的酒精或DDW(deuteriumdepleted water)為隔絕氧氣的作用(也有一部分壓膠作用),必須要加,倒出后可倒置制膠器晾干或用濾紙從玻璃板間隙的一角吸干,要保證濾紙干凈無雜質(zhì)。圖中將濾紙插入玻璃板間隙的做法個(gè)人不推薦,雖然不排除某些蛋白不受影響,但為了確保實(shí)驗(yàn)順利,還是注意一些為宜。

分離膠凝固后加入濃縮膠,并立即插入梳子(對(duì),它就叫梳子),插入梳子的過程中可以左右小幅度擺動(dòng)梳子,避免濃縮膠中留有氣泡。

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濃縮膠凝固時(shí)間大約在40-60分鐘,可觀察到膠體與梳子分離,拔出梳子(或觀察不到,但只要時(shí)間大概夠了也可以拔出),注意要豎直向上拔出,避免左右擺動(dòng)破壞凝膠,導(dǎo)致前功盡棄。

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另外,如果Western Blot電泳時(shí)蛋白出現(xiàn)跑歪或條帶相連的情況,可能的原因包括:(1)膠體均一度不好(一般是因?yàn)榧尤氲讲AО逯皼]有充分搖勻);(2)膠體有氣泡;(3)下層膠和上層膠的界面不平;(4)儀器的問題等。

下圖為蛋白正常的樣例,每一孔的蛋白各自待在自己的“跑道”位置,互不打擾:
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但是如果發(fā)現(xiàn)根本沒有條帶,一定要去檢查實(shí)驗(yàn)步驟是否有錯(cuò)誤,去查閱文獻(xiàn),有可能你的目標(biāo)蛋白在你的樣本中根本不表達(dá),或只有在特定條件下才表達(dá)。
 
關(guān)于蛋白樣本提取:開始實(shí)驗(yàn)前問自己實(shí)驗(yàn)臺(tái)面、液氮、器械準(zhǔn)備好了嗎?實(shí)驗(yàn)助手找好了嗎?請(qǐng)盡可能快速剪碎組織,剪得盡可能碎,這樣與裂解液充分接觸(記得稱重,根據(jù)樣本重量確定加入裂解液體積),提取出來的樣本才不會(huì)出現(xiàn)濃度過低的問題。樣本數(shù)量較多時(shí)盡量要有小伙伴合作,否則第一個(gè)和最后一個(gè)樣本相差時(shí)間太久,可能會(huì)導(dǎo)致提取效果不理想。如果只能自己提取樣本的話,盡量不要一次性提取太多數(shù)量的樣本,避免手忙腳亂哦。切記一定根據(jù)實(shí)驗(yàn)步驟實(shí)施。
 
關(guān)于免疫熒光染色:是以熒光物質(zhì)標(biāo)記抗體而進(jìn)行抗原定位的技術(shù)。孵育抗體時(shí)需要避光,注意阻水圈保持閉合,避免漏液;洗完切片盡量擦去阻水圈,注意不要碰到組織切片,否則可能前功盡棄。吸取封片甘油量根據(jù)組織切片大小適當(dāng)調(diào)整,放蓋玻片時(shí)注意不要留有氣泡等等。封片完成之后請(qǐng)立即拍片,如果時(shí)間不允許,可避光4℃暫放(最好不超過24小時(shí),如果存放2-3天的經(jīng)歷,拍出來的效果可能不盡人意),放太久熒光會(huì)逐漸淬滅的。
另外,免疫熒光染色一般可選擇染1種(下圖綠色UEA-1,DAPI染胞核不計(jì)入抗原種數(shù))或2種抗原抗體結(jié)合物(綠色TIR和紅色MUC2,黃色視為二者共存),也可染3種及以上,但是要根據(jù)激光掃描共聚焦顯微鏡(Confocal laserscanning microscope)是否可以顯示相應(yīng)顏色來決定,一般染2種就可以了。
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如果加入多于1種的抗體,那么請(qǐng)注意區(qū)分兩種抗體的來源應(yīng)與樣本來源各不相同(例如,小鼠的結(jié)腸組織,不能使用小鼠來源的抗體,可以使用兔來源、驢來源或其他物種來源的抗體)。

7. 要有準(zhǔn)備意識(shí) 做到心中有數(shù)
有些實(shí)驗(yàn)試劑需要現(xiàn)用現(xiàn)配,也就是說我們不能把所有材料都準(zhǔn)備好再做實(shí)驗(yàn),需要在實(shí)驗(yàn)間隙準(zhǔn)備一些材料。那么作為實(shí)驗(yàn)新手,可能會(huì)出現(xiàn)下一步所需要的東西來不及準(zhǔn)備的情況。這就需要我們?cè)趯?shí)驗(yàn)過程中有意識(shí)地去思考接下來的實(shí)驗(yàn)步驟,做到心中有數(shù),才不會(huì)出現(xiàn)手忙腳亂的情況。
 
8. 注意科學(xué)性原則
無論哪一種實(shí)驗(yàn),都應(yīng)遵循實(shí)驗(yàn)的科學(xué)性,不可人為改變實(shí)驗(yàn)結(jié)果。當(dāng)實(shí)驗(yàn)結(jié)果與實(shí)驗(yàn)假設(shè)不一致時(shí),應(yīng)遵循事物的客觀規(guī)律。有些結(jié)果可能由于實(shí)驗(yàn)操作過程出現(xiàn)一些問題導(dǎo)致其本身就是錯(cuò)誤的,應(yīng)多次實(shí)驗(yàn)進(jìn)行驗(yàn)證。當(dāng)然,由于個(gè)體差異,某些實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)會(huì)偏低或偏高,可以排除差異較大的個(gè)體,但是不可以純粹為了驗(yàn)證假設(shè),而有傾向地選取靠近假設(shè)的數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì),這是違背科學(xué)性原則的。
 
9. 及時(shí)書寫實(shí)驗(yàn)記錄
很多時(shí)候?qū)嶒?yàn)結(jié)果不好的原因往往可以從實(shí)驗(yàn)記錄中找到蛛絲馬跡,但它卻是經(jīng)常被忽略的。實(shí)驗(yàn)記錄的書寫應(yīng)該做到及時(shí)、真實(shí)、準(zhǔn)確、完整地記錄實(shí)驗(yàn)名稱、實(shí)驗(yàn)?zāi)康摹?shí)驗(yàn)材料(包括實(shí)驗(yàn)試劑及配制方法、儀器、樣本等)、實(shí)驗(yàn)過程和實(shí)驗(yàn)結(jié)果、出現(xiàn)的問題(應(yīng)分析可能原因及解決辦法)和實(shí)驗(yàn)小結(jié)(簡(jiǎn)要總結(jié)實(shí)驗(yàn)結(jié)果和解釋,有助于指導(dǎo)后續(xù)研究)。每次實(shí)驗(yàn)還應(yīng)該記錄實(shí)驗(yàn)參與人、實(shí)驗(yàn)的日期和時(shí)間、以及實(shí)驗(yàn)條件(包括溫度、濕度等)。因此一定要按時(shí)及時(shí)地書寫實(shí)驗(yàn)記錄,以便在實(shí)驗(yàn)過程中追溯實(shí)驗(yàn)原始數(shù)據(jù)并隨時(shí)查閱。
 
10. 放平心態(tài) 保持樂觀

做科研不是一簇而就的事情,不要期望只做一次實(shí)驗(yàn)就驗(yàn)證了假設(shè)或得到滿意的結(jié)果。前期可能會(huì)出現(xiàn)各種各樣的問題,這是通向科研本身的必經(jīng)之路,沒有捷徑可言,而且要保證實(shí)驗(yàn)結(jié)果的可重復(fù)性,也必須多重復(fù)幾次,夯實(shí)實(shí)驗(yàn)結(jié)論,最終的理論才更具說服力。保持一個(gè)樂觀的心態(tài)做實(shí)驗(yàn)是我們一直需要修煉的技能,實(shí)驗(yàn)虐我千百遍,我待實(shí)驗(yàn)如初戀。當(dāng)然,有些實(shí)驗(yàn)是就算重復(fù)N多次也不會(huì)有什么令人滿意的結(jié)果的,因?yàn)榭赡芤婚_始的方向就是錯(cuò)的。這就需要我們從知識(shí)儲(chǔ)備開始,立論假設(shè)就要嚴(yán)謹(jǐn)、認(rèn)真且全面,一定是閱讀了大量參考文獻(xiàn)和資料之后得出的研究方向和假設(shè),要有立題依據(jù),可以說查閱文獻(xiàn)資料在整個(gè)做實(shí)驗(yàn)階段是貫穿始終的。

各個(gè)實(shí)驗(yàn)都有或簡(jiǎn)單或復(fù)雜的步驟和技巧,但是核心原則和思想是相通的,以上分享的部分濕實(shí)驗(yàn)中所需要注意的一些細(xì)節(jié)和技巧,希望對(duì)生信分析過程中需要學(xué)習(xí)濕實(shí)驗(yàn)進(jìn)行驗(yàn)證的小伙伴有所幫助。

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