目前市場上的PCR產(chǎn)品主要是基于ABI開創(chuàng)的qPCR技術(shù)平臺和榮研化學(xué)開創(chuàng)的LAMP技術(shù)平臺,有的公司會在這兩個技術(shù)平臺的基礎(chǔ)上進(jìn)行研發(fā)創(chuàng)新,主要還是分成變溫和恒溫兩大類,而對于PCR的定量功能實現(xiàn)這塊,市場上的產(chǎn)品幾乎都是基于qPCR平臺實現(xiàn)對初始模板DNA分子的定量,但是如果將微流控芯片技術(shù)引入,PCR的定量就不局限于qPCR技術(shù)了~ 1 PCR定量的理論基礎(chǔ) 視頻1:PCR擴(kuò)增原理視頻(來源【6】泛生子基因) 2)qPCR(實時熒光定量PCR)技術(shù)原理 實時熒光定量PCR技術(shù)主要通過兩種方式——熒光染料或者熒光標(biāo)記的探針對PCR產(chǎn)物進(jìn)行標(biāo)記跟蹤,實時在線監(jiān)控反應(yīng)過程,并結(jié)合相應(yīng)的軟件對產(chǎn)物進(jìn)行分析,計算待測樣品模板的初始濃度。 3)qPCR定量的數(shù)學(xué)理論模型 PCR擴(kuò)增的指數(shù)時期,模板的Ct值和該模板的起始拷貝數(shù)存在線性關(guān)系,成為定量的依據(jù)。 傳統(tǒng)的qPCR通常以循環(huán)閾值( cycle threshold,CT)為定量分析的基礎(chǔ),認(rèn)為在指數(shù)擴(kuò)增的開始階段樣品間的細(xì)小誤差尚未放大且擴(kuò)增效率恒定。對于一個PCR反應(yīng),到達(dá)循環(huán)閾值時 其中,N0為初始模板的拷貝數(shù),Nt為第CT個循環(huán)時產(chǎn)物的拷貝數(shù),E為擴(kuò)增效率。將上式兩邊取對數(shù),得到 對于一個特定的PCR反應(yīng),擴(kuò)增效率E和CT個循環(huán)時的拷貝數(shù)Nt均為定值,因此CT值與初始模板拷貝數(shù)N0,的對數(shù)成反比關(guān)系【5】。 2 PCR如何實現(xiàn)定量 1)定量PCR的幾種實現(xiàn)方式 定量PCR:以參照物為標(biāo)準(zhǔn),對PCR終產(chǎn)物進(jìn)行分析或?qū)CR過程進(jìn)行監(jiān)測,從而達(dá)到評估樣本中靶基因的拷貝數(shù),稱為定量PCR。定量PCR的可行性定量一般是在PCR擴(kuò)增的指數(shù)期進(jìn)行的,只有指數(shù)擴(kuò)增時期,CT值與起始濃度的對數(shù)成線性關(guān)系,且該值具有重現(xiàn)性。
表1:絕對定量與相對定量概述(來源:www.thermofisher.cn) qPCR絕對定量和相對定量 1)絕對定量:精確的計算初始反應(yīng)的模板濃度(DNA,RNA)。 2)相對定量:相對定量用于分析特定樣品相對于參照樣品(比如,未處理的對照組)某個基因表達(dá)量的變化。 qPCR絕對定量(標(biāo)準(zhǔn)曲線法) 圖1:對初始模板進(jìn)行定量分析(來源:先達(dá)基因官網(wǎng)) qPCR相對定量 相對定量可根據(jù)從所有實時熒光定量 PCR 儀器獲取的數(shù)據(jù)而進(jìn)行。用于相對定量的計算方法有:標(biāo)準(zhǔn)曲線法和比較 CT 法。 相對定量是測定在測試樣本中目標(biāo)核酸片段與校對樣本中同一序列片段的相對比例,而不需要知道它們在每個樣本中的拷貝數(shù)。 圖2:比較CT法示意圖(圖源:線上) 如圖2實驗樣本和對照樣本都有擴(kuò)增曲線,都有相應(yīng)的CT值,Ct值取決于閾值,閾值取決于基線,基線取決于實驗的質(zhì)量,Ct值是一個完全客觀的參數(shù)。Ct值越小,模板DNA的起始拷貝數(shù)越多;Ct值越大,模板DNA的起始拷貝數(shù)越少。正常的CT值范圍在18-30之間,過大和過小都將影響實驗數(shù)據(jù)的精度。PCR的理論擴(kuò)增效率是2^Ct,所以實驗樣本相對于對照樣本的擴(kuò)增倍數(shù)就等于2^ΔCt(實驗樣本擴(kuò)增曲線的CT值減去對照樣本的CT值)。 數(shù)字 PCR 絕對定量 圖3:數(shù)字 PCR 使用陽性(白色)與陰性(黑色)PCR 反應(yīng)的比例來計算目標(biāo)分子的數(shù)量(圖源:www.thermofisher.cn) 如圖3,數(shù)字PCR是一種核酸檢測和定量分析的新方法,可以作為傳統(tǒng)實時定量PCR的替代方法,以實現(xiàn)絕對定量及稀有等位基因的檢測。數(shù)字PCR的工作原理在于將DNA或cDNA樣品分割為許多單獨(dú)、平行的PCR反應(yīng),部分這些反應(yīng)包含了靶標(biāo)分子(陽性),而其他不包含(陰性)。單個分子可以被擴(kuò)增一百萬倍或更多。在擴(kuò)增期間,TaqMan化學(xué)試劑及染料標(biāo)記探針可用于檢測特定序列的靶標(biāo)。當(dāng)不存在任何靶標(biāo)序列時,沒有信號累積。PCR分析后,陰性反應(yīng)片段用于生成樣品中靶標(biāo)分子的絕對計數(shù),而無需標(biāo)準(zhǔn)品或內(nèi)標(biāo)【1】。 數(shù)字PCR的數(shù)學(xué)理論模型 與傳統(tǒng)qPCR方法不同的是數(shù)字PCR采用直接計數(shù)的方法進(jìn)行定量分析,也就是在PCR擴(kuò)增結(jié)束后有熒光信號(產(chǎn)物)記為1,無熒光信號(產(chǎn)物)記為0,有熒光信號的反應(yīng)單元中至少包含一個拷貝的目標(biāo)分子。理論上,在樣品中的目標(biāo)DNA濃度極低的情況下,有熒光信號的反應(yīng)單元數(shù)目等于目標(biāo)DNA分子的拷貝數(shù)。但是,在通常情況下,數(shù)字PCR的反應(yīng)單元中可能包含兩個或兩個以上的目標(biāo)分子,這時可以采用泊松概率分布公式( Poissondistribution)進(jìn)行計算。引用【5】數(shù)學(xué)模型公式: n為反應(yīng)單元總數(shù),f為有熒光信號的反應(yīng)單元數(shù),m為樣品溶液的稀釋系數(shù),c為樣品的原始拷貝數(shù)(濃度)。由上數(shù)學(xué)公式,根據(jù)反應(yīng)單元總數(shù)和有熒光信號的單元數(shù)以及樣品的稀釋系數(shù),就可以得到樣本的最初拷貝數(shù)( 濃度) 。 數(shù)字PCR的定量方法不依賴于擴(kuò)增曲線的循環(huán)閾值,因此不受擴(kuò)增效率的影響,也不必采用看家基因( housekeeping gene)和標(biāo)準(zhǔn)曲線,具有很好的準(zhǔn)確度和重現(xiàn)性,可以實現(xiàn)絕對定量分析【5】。 (拓展問題)LAMP等溫擴(kuò)增的核酸檢測方法是否可以定量? 目前LAMP技術(shù)多用于定性實驗,也可通過濁度儀檢測副產(chǎn)物焦磷酸鎂沉淀,從而間接達(dá)到基因定量的目的,該方法所需濁度儀應(yīng)用范圍較窄,且儀器成本高。但LAMP并不是不能實現(xiàn)定量,查線上的文獻(xiàn)也發(fā)現(xiàn)有公司和科研機(jī)構(gòu)在做LAMP的熒光定量研究,原理上還是基于染料或者探針的熒光信號和擴(kuò)增產(chǎn)物呈現(xiàn)一定的數(shù)學(xué)關(guān)系而對樣本中的核酸分子進(jìn)行定量或者粗定量,感興趣的朋友可以學(xué)習(xí)文末參考項的【7】和【8】。 但是LAMP法如果應(yīng)用到數(shù)字PCR的液滴或者微流控芯片的微腔中,那也可以絕對定量,畢竟數(shù)字PCR定量不需要做標(biāo)準(zhǔn)曲線。 3 微流控技術(shù)對于實現(xiàn)PCR的定量有什么優(yōu)勢? 微流控芯片相比較孔板這類傳統(tǒng)耗材有著微型化、自動化、多通量、極小樣本體積(數(shù)字PCR可達(dá)皮升級)以及密閉性的優(yōu)點(diǎn),這也是為什么市場上的大多數(shù)POCT產(chǎn)品都免不了需要往微流控方向發(fā)展。對于PCR的定量功能實現(xiàn),微流控技術(shù)會使得PCR定量的實現(xiàn)更加直觀直接。 圖4: DiaSorin 96 well Universal Disc(圖片源:DiaSorin官網(wǎng)) 圖5:幾種典型數(shù)字 PCR 芯片: a) 微反應(yīng)室 /孔板數(shù)字PCR( OpenArrayTM);b) 大規(guī)模集成微流控數(shù)字 PCR芯片( BioMarkTM); c) 微液滴數(shù)字 PCR( QX100TM)(來源:【5】) |
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